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分子生物學(xué)研究對(duì)提取RNA要求較高，純度高、完整性好、含量高的RNA是獲得實(shí)驗(yàn)成功的關(guān)鍵和前提。小編給各位小伙伴總結(jié)了以下RNA提取常見(jiàn)問(wèn)題及RNA質(zhì)量的評(píng)估方法：
 

常見(jiàn)的RNA提取方法有異硫氰酸胍-苯酚法（Trizol法）、離心柱法和磁珠法。Trizol法是動(dòng)物組織及動(dòng)物細(xì)胞總RNA提取常用的方法。Trizol法裂解能力較強(qiáng)，尤其適合小樣本及特別難提取的組織，如皮膚，動(dòng)物結(jié)締組織等總RNA的提取；另外Trizol作為一種通用型的裂解試劑，還可以用于植物組織、細(xì)菌、真菌等組織的提取。離心柱法是一種十分穩(wěn)定的RNA提取方法，電泳條帶較為均一，但分子量較小的RNA會(huì)被過(guò)濾掉。磁珠法是使RNA與納米磁珠結(jié)合，在磁場(chǎng)作用下，磁珠-核酸復(fù)合物與液體分離，再把核酸從磁珠上洗脫下來(lái)。對(duì)于含多糖多酚的植物組織如油茶、茶葉、油菜等還可以使用CTAB法進(jìn)行總RNA的提取。那么在RNA提取過(guò)程中如何防止RNA降解，保證RNA質(zhì)量？
 

如何避免RNA降解？

1.避免RNA酶的產(chǎn)生：

A 、避免內(nèi)源性RNAase：

內(nèi)源性RNAase是造成RNA降解的最重要原因。收集樣本時(shí)，內(nèi)源性RNA酶釋放，降解RNA，降解速度與酶含量和溫度有關(guān)，所以收集樣本時(shí)必須馬上進(jìn)行內(nèi)源RNA酶的失活。內(nèi)源性RNAase失活方法：①迅速研磨破碎后加入裂解液中保存；②立即切成小塊投入液氮中保存；③使用RNAlater保護(hù)劑等。

B、避免外源性RNAase：

使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭，玻璃器皿要消毒避免交叉污染，注意：戴帽子、戴口罩、橡膠無(wú)菌手套，在清潔灰塵少的試驗(yàn)臺(tái)提取。

2.提高RNA提取效率：

A 、組織RNA提取：

選用新鮮組織，這樣RNA提取的效果比較好；如果不是新鮮的(最好在半年之內(nèi)，-80℃或者液氮中凍存的)組織，注意不要反復(fù)凍融，從冰凍狀態(tài)拿到0-4℃，待組織解凍后，用DEPC泡過(guò)的剪刀剪一小塊組織，稱重后，放到預(yù)冷的勻漿器中，進(jìn)行勻漿處理。注意：速度不要太快，要有間隙，否則由于摩擦產(chǎn)熱，RNA遇熱會(huì)加速降解。如果一次做多個(gè)標(biāo)本的RNA提取，也要這樣做，更不能急。后面的步驟和細(xì)胞RNA提取一樣。

B、培養(yǎng)細(xì)胞的RNA提取：

貼壁細(xì)胞，需要先用胰酶消化后，然后收集到離心管中，離心，去上清然后用PBS多洗2-3次，以去除多余的胰酶。懸浮細(xì)胞，直接用吸管或者加樣槍吹打，以使細(xì)胞基本可以被吹下來(lái)。然后離心去上清，不需要用PBS洗。

如何確認(rèn)RNA質(zhì)量的好壞?

1. RNA溶液純度的檢測(cè)：

RNA溶液在280、320、230、260nm下的吸光度分別代表了核酸、背景（溶液渾濁度）、鹽濃度和蛋白等有機(jī)物的值。一般我們通過(guò)OD260/OD280的值來(lái)判斷RNA純度：

OD260/280的值在1.9-2.1之間，認(rèn)為RNA純度較好；

OD260/280的值小于1.8時(shí)，表明蛋白質(zhì)雜質(zhì)較多；

OD260/280的值大于2.2時(shí)，表明RNA已經(jīng)降解；

注意：如果用TE溶液洗脫RNA，會(huì)使OD260/280的值偏大。